- CHƯƠNG 2: NGUYÊN LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP CHƯƠNG 2: NGUYÊN LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP 2.1. - Trong nghiên cứu này, các chủng vi khuẩn kỵ khí được phân lập từ 34 mẫu đất ở các vùng nông nghiệp và các mẫu này được thu thập ở độ sâu ít nhất là 1 mét, sau đó được bảo quản ở -4oC trong điều kiện kỵ khí. - Phương pháp nghiên cứu 2.2.1. - Sàng lọc và phân lập vi khuẩn kị khí xylanolytic-cellulolytic ưa nhiệt. - Vi khuẩn được nuôi cấy trong môi trường cơ bản gồm K2HPO4 0,15g/l, KH2PO4 0,29g/l, urea 0,21g/l, cao nấm men 0,45g/l, muối khoáng 0,02%, resazurin 0,0025%, cystein 0,004% và giấy lọc 1% làm cơ chất. - Môi trường được xử lý bằng dòng khí nitơ để loại bỏ khí oxi tạo môi trường kị khí, sau đó khử trùng và ủ ở 60oC, pH 7. - Quá trình sinh trưởng của vi khuẩn được quan sát hàng ngày và các bước sàng lọc được tiến hành vài lần cho đến khi thu được kết quả tốt.. - Sau đó 1 ml mỗi mẫu được dàn đều lên đĩa thạch 2,5% với môi trường tương tự như trên có chứa bã giấy 1% rồi ủ ở 60oC từ 2-3 ngày trong buồng cấy kị khí.. - Nhận dạng chủng vi khuẩn kị khí xylanolytic-cellulolytic ưa nhiệt. - Kiểm tra hình thái tế bào vi khuẩn. - Phương pháp nhuộm Gram cải tiến như sau [1]:. - Chuẩn bị chủng vi khuẩn sạch: các chủng được nuôi cấy trên môi trường thạch đã nêu ở trên.. - 1-2 giọt dung dịch (lugol) được bổ sung và giữ 30 giây đến 1 phút. - Tiêu bản được nhuộm bổ sung safranin từ 30 giây đến 1 phút, sau đó được rửa bằng nước, thấm, hong khô và được quan sát dưới vật kính dầu.. - Kết quả: vi khuẩn Gram dương bắt màu xanh tím, vi khuẩn Gram âm có màu hồng. - Vi khuẩn được nuôi cấy lắc ở 50oC trong môi trường BM. - Dịch nuôi cấy được ly tâm ở 5000 vòng/phút trong 10 phút để thu tế bào. - 1 ml dung dịch P1 được bổ sung để hòa tan tủa tế bào (Tris HCl 25 mM pH 8, EDTA 10 mM pH 9, glucose 50 mM). - Sau đó 50 μl lysozyme 20 mg/ml được thêm vào, trộn đều và ủ ở 37oC trong 30 phút. - 50 μl SDS 20% được bổ sung, trộn đều và để ở nhiệt độ thường khoảng 10 phút, thỉnh thoảng lại được trộn đều. - Khoảng 3-4 μl Rnase được bổ sung, để ở nhiệt độ thường khoảng 10 phút. - 1 thể tích tương đương hỗn hợp phenol:chloroform:isoamylalcohol tỉ lệ 25:24:1 được bổ sung, lắc mạnh bằng vortex trong 30 giây. - Sau đó được ly tâm ở 8000 vòng/phút trong 15 phút, phần dịch lỏng ở phía trên được hút ra và chuyển vào ống khác. - Khoảng 1/10 thể tích dung dịch CH3COOK 3M pH 5,2 được thêm vào, trộn đều, sau đó 2,5 thể tích ethanol tuyệt đối để lạnh được bổ sung, lắc đảo ống khoảng 10 lần và giữ ở -20oC trong 15-20 phút. - Sau đó ly tâm ở 13000 vòng/phút trong 25 phút để thu kết tủa ADN. - Kết tủa được rửa bằng ethanol lạnh 70% và được ly tâm ở 13000 vòng/phút trong 7 phút. - Sản phẩm được kiểm tra bằng phương pháp điện trên gel agarose 1%.. - Phương pháp này cho phép xác định một cách tương đối nồng độ ADN đồng thời kiểm tra độ tinh sạch của mẫu ADN tách chiết.. - Hệ số nằm trong khoảng 1,8-2,0 chứng tỏ chế phẩm ADN có độ sạch cần thiết cho các nghiên cứu phân tích sau đó. - Đoạn gen mã hóa cho ARN ribosome 16S ở các chủng vi khuẩn có kích thước khoảng 1,5 kb được nhân bản bằng phản ứng PCR với cặp mồi được thiết kế như sau [35]:. - Thành phần phản ứng PCR. - 16,9 μl Tổng thể tích phản ứng PCR là 25 μl Hỗn hợp được trộn đều, chuyển vào máy PCR và tiến hành chạy với chế độ nhiệt: 94oC trong 3 phút để làm biến tính hoàn toàn ADN khuôn, tiếp theo là 35 chu kỳ phản ứng lặp lại gồm 3 bước: 94oC trong 1 phút để biến tính ADN, 60oC trong 1 phút để gắn mồi và 72oC trong 1,5 phút để kéo dài chuỗi, sau đó đến thời gian ủ ở 72oC trong 7 phút và giữ mẫu ở 4oC đến khi phân tích. - Điện di kiểm tra sản phẩm trên gel agarose 1%. - Gắn sản phẩm PCR vào vector p-GEM T. - Thành phần của phản ứng gắn sản phẩm PCR vào vector p-GEM T gồm: 2 μl sản phẩm PCR, 5 μl đệm T4- ADN ligase 2x, 1 μl T4 ADN ligase, 1 μl vector p-GEM T và 1 μl ddH2O. - Hỗn hợp phản ứng sau đó được ủ ở nhiệt độ 22oC trong 3 giờ và được giữ ở 4oC cho đến khi biến nạp vào tế bào khả biến E. - Tế bào khả biến E. - Hỗn hợp phản ứng gắn ở trên được bổ sung vào, trộn nhẹ và để trên đá 20 phút tạo điều kiện cho vector bám lên thành tế bào. - Sau đó hỗn hợp được làm sốc nhiệt bằng cách ủ ở 42oC trong 45 giây và để trên đá 2 phút. - 500 μl môi trường LB lỏng được bổ sung, ủ ở 37oC trong 10 phút và được nuôi lắc ở tốc độ 200 vòng/phút, 37oC trong 40 phút. - Cấy trải tế bào trên đĩa thạch chứa môi trường LB đặc có chứa 50 μg/ml ampicillin, 30 μl X-gal 20 mg/ml và 30 μl IPTG 100 mM và nuôi trong tủ ấm 37oC qua đêm.. - Tách ADN plasmid từ vi khuẩn E.coli DH5α. - ADN plasmid được tách theo phương pháp của Sambrook và cộng sự [34. - Khuẩn lạc dương tính trên đĩa thạch được cấy vào 1,5 ml môi trường LB lỏng có chứa 50 μg/ml ampicillin, được nuôi lắc ở 37oC, 200 vòng/phút từ 14-16 giờ. - Dịch nuôi cấy được ly tâm với tốc độ 10000 vòng/phút trong 10 phút để thu tủa tế bào. - Tủa được hòa tan trong 100 μl dung dịch I (25 mM Tris-HCl pH 8. - 50 mM glucose) và để ở nhiệt độ phòng 5 phút · 200 μl dung dịch II (NaOH 0,2 M, SDS 1%) được bổ sung, đảo nhẹ 5-10 lần và đặt trên đá lạnh 5 phút để phá vỡ tế bào giải phóng plasmid. - Hỗn hợp được ly tâm với tốc độ 13000 vòng/phút, 4oC trong 20 phút để loại tủa và dịch nổi được thu sang ống effendorf mới. - 2 μl RNAse 10 mg/ml được bổ sung để loại bỏ ARN · 1 thể tích tương đương hỗn hợp phenol:chloroform:isoamylalcohol (25:24:1) được bổ sung, trộn đều rồi được ly tâm 13000 vòng/phút trong 10 phút ở 4oC để loại bỏ protein và thu dịch nổi. - Sau đó tủa ADN được thu lại bằng ly tâm ở 13000 vòng/phút, 15 phút, 4oC để loại bỏ dịch nổi và được rửa bằng 1ml cồn 70. - Tủa được làm khô tự nhiên khoảng 30 phút và được hòa lại trong 30-50 μl H2O. - Chuẩn bị khuôn cho phản ứng PCR cho xác định trình tự: Sản phẩm PCR đoạn gen mã hóa cho ARN ribosome 16S được pha loãng ở nồng độ thích hợp (khoảng 50-100 pmol). - Phản ứng PCR cho xác định trình tự gồm: 6 µl hỗn hợp DTCS Master mix, 1 µl khuôn, 1 µl mồi (cả 2 mồi xuôi pUC19F và mồi ngược pUC19R), H2O vô trùng vừa đủ 20 µl.. - Phản ứng PCR được thực hiện như sau: 96oC – 1 phút để khởi động nóng, tiếp theo là 35 chu kỳ gồm 3 bước: 96oC – 30 giây để làm biến tính ADN, 60oC – 30 giây để gắn mồi và 60oC – 4 phút để kéo dài chuỗi. - Mẫu sau đó được ủ tiếp ở 60oC trong 7 phút và giữ ở 4oC cho đến khi phân tích.. - Sản phẩm PCR của phản ứng PCR này sẽ tiếp tục được xử lý trước khi đưa vào máy đọc trình tự. - Dung dịch dừng phản ứng (stop solution) được chuẩn bị ngay trước khi dùng gồm: 20 µl kali acetate 3M pH 5,2. - 10 µl glycogen (giữ ở -20oC) và được trộn đều. - 5 µl dung dịch dừng phản ứng được bổ sung vào 1 phản ứng PCR 20 µl và được trộn càng đều càng tốt. - 60 µl ethanol 95% giữ ở -20oC được bổ sung và trộn kỹ rồi được ly tâm ngay ở 13000 vòng/phút trong 20 phút ở 4oC. - Kết tủa được rửa 2 lần, mỗi lần bằng 200 µl ethanol 70% giữ ở -20oC và được ly tâm ở 13000 vòng/phút trong 5 phút. - Dịch nổi được hút bỏ bằng pipet, kết tủa được thu và được để khô ở nhiệt độ phòng. - Kết tủa được hòa tan trở lại bằng 40 dung dịch SLS (sample loading solution. - Trình tự nucleotide của gen nhân dòng được giải theo phương pháp của Sanger sử dụng máy đọc trình tự CEQ-8000 (Beckman Coulter). - Chủng vi khuẩn được nuôi cấy trong lọ kín với 50 ml môi trường cơ bản pH 7 (K2HPO4 0,15g/l, KH2PO4 0,29g/l, urea 0,21g/l, cao nấm men 0,45g/l, muối khoáng 0,02%, resazurin 0,0025%, cystein 0,004. - Môi trường được khử trùng và xử lý bằng khí nitơ. - Sau đó các lọ này được đóng kín rồi ủ trong máy lắc ổn nhiệt ở 60oC. - Tại thời điểm xác định, mẫu được lấy ra để phân tích hoạt độ enzyme. - Xác định hoạt độ enzyme 2.2.4.1. - Xác định hoạt độ enzyme. - Hoạt độ enzyme xylanase: môi trường phân tích gồm 0,125 ml dịch enzyme và 0,125 ml xylan lúa mạch 1% trong đệm sodium phosphate 0,1M, pH 7. - Sau khi ủ ở nhiệt độ 50oC trong 15 phút, quá trình giải phóng đường khử được định tính theo phương pháp Somogyi-Nelson [38] với đường xylose làm tiêu chuẩn.. - Hoạt độ enzyme cellulase được xác định như phương pháp xác định enzyme xylanase ở trên và sử dụng cacboxymethyl cellulose (CMC) làm cơ chất và đường glucose làm tiêu chuẩn. - Một đơn vị hoạt độ là lượng enzyme phân giải cơ chất thành đường khử tương đương 1μmol glucose trong một phút ở điều kiện thí nghiệm.. - Hoạt độ enzyme β-xylosidase: môi trường định tính hoạt độ enzyme gồm 0.9 mM p-nitrophenyl β-D-xylopyranoside trong đệm phosphate 50 mM, pH 7 rồi đưa đến thể tích cuối cùng 1,1 ml. - Hỗn hợp phản ứng được ủ ở 50oC trong 30 phút, và thêm 2 ml sodium carbonate 0,5 M để kết thúc phản ứng. - Hoạt độ enzyme β-glucosidase và arabinofuranosidase được xác định tương tự như xác định hoạt độ enzyme β-xylosidase, nhưng thay cơ chất bằng 1 mM p-nitrophenyl β-D-glucopyraniside đối với β-glucosidase và 0,83 mM p-nitrophenyl α-L-arabinofuranoside đối với arabinofuranosidase.. - Hoạt độ enzyme acetyl esterase được xác định dựa vào phương pháp của Mackenzie [25].. - Hoạt độ enzyme cellobiohydrolase được xác định bằng phương pháp của Kohring [16].. - Ảnh hưởng của pH đối với hoạt độ và độ bền của enzyme. - Độ pH tối ưu và độ bền của enzyme được xác định bằng cách sử dụng hệ thống đệm khác nhau. - Hoạt độ của xylanase và cellulase tại giá trị pH khác nhau được xác định bằng cách sử dụng cơ chất xylan lúa mạch cho enzyme xylanase và CMC cho cellulase. - Phản ứng pH được điều chỉnh từ pH=4 đến pH=9 với các đệm citrate (pH 4 – pH 6), đệm photphat (pH 6 – pH 7) và đệm Tris-HCl (pH 7 – pH 9) nồng độ 50 mM. - Độ bền pH của enzyme được xác định bằng cách ủ enzyme ở 50oC trong 30 phút với các giá trị pH khác nhau (10 mM). - Sau đó hoạt độ enzyme còn lại được xác định theo phương pháp đã nêu ở trên. - Ảnh hưởng của nhiệt độ đối với hoạt độ và độ bền của enzyme. - Nhiệt độ tối ưu của enzyme được xác định bằng cách đo hoạt độ ở dãy nhiệt độ 40oC đến 90oC, pH 7. - Độ bền nhiệt của enzyme được đo bằng cách ủ enzyme ở pH 7 trong 30 phút ở các nhiệt độ khác nhau. - Sau đó hoạt độ còn lại được xác định như phương pháp đã nêu ở trên. - Xác định protein. - Nồng độ protein được xác định theo phương pháp của Lowry và các cộng sự [22] với albumin huyết thanh của bò làm chất chuẩn. - Tại thời gian nhất định, sản phẩm thủy phân được thu nhận và lượng đường khử giải phóng được xác định bằng phương pháp Somogyi-Nelson [38]. - Tách phức hệ multienzyme từ dịch lỏng của môi trường nuôi cấy. - Chủng vi khuẩn được nuôi cấy, rồi đem ly tâm, thu lấy dịch lỏng phía trên (675 ml). - Sau đó dịch lỏng được cô đặc (25 lần) qua túi lọc dòng chảy nhanh với màng lọc có kích thước 5 kDa.. - Sau khi ly tâm, protein liên kết cellulose được rửa qua vài lần với đệm phosphate 100 mM, pH 7 và được rửa chiết bằng triethylamine 1%. - Độ sạch cũng như khối lượng phân tử của chế phẩm enzyme được xác định bằng phương pháp điện di trên gel polyacrylamid có chứa SDS (SDS-PAGE) của Laemmli [19], sử dụng nồng độ gel cô là 5% và gel tách là 12%, nhuộm băng bằng dung dịch Coomassie Brilliant Blue (CBB).. - Kỹ thuật xylanase và CMCase zymogram được xác định bằng phương pháp điện di SDS-10% gel polyacrylamid chứa xylan 0,1% hoặc CMC 0,1% [16]. - Sản phẩm thủy phân vỏ ngô bởi enzyme thô được xác định TLC trên gel silica 60 F254 với hỗn hợp n-butanol:axit acetic:nước theo tỉ lệ 2:1:1 [18]. - Các chấm đường được xác định khi sấy đĩa đến hơn 100oC sau khi đã phun đều 4 g α-diphenylamine, 4 ml aniline, 200 ml aceton và 30 ml axit phosphoric 80% [33]